Las enfermedades parasitarias afectan a diversos grupos de población
de todas las edades y razas, representando un elevado riesgo para la salud
y la vida de extensos sectores. Por sus características peculiares,
afectan de preferencia a los grupos jóvenes y de mayor productividad,
que viven en zonas suburbanas de las grandes ciudades o en zonas rurales.
El ciclo de cada parásito expresa la complejidad del fenómeno
biológico. Las variables agente, huésped y ambiente (tríada
ecológica) son fundamentales para orientar el diagnóstico
parasitario. Se debe tomar en consideración el estado parasitario
buscado (huevo, quiste, larva, etcétera.), tanto en el huésped
como en el ambiente, para seleccionar el tipo y características
de la muestra (orina, deposición, ambiente, etc.)
Debido a la existencia de infecciones transmitidas en forma natural desde
animales vertebrados al hombre y viceversa (zoonosis), la búsqueda
de los parásitos se extiende incluso al reservorio animal. Por
ejemplo, en toxocariacis y equinococosis se puede solicitar colaboración
a los laboratorios de medicina veterinaria para estudiar las deposiciones
de las mascotas (perros). También se pueden estudiar fuentes infectantes,
como carnes (triquinosis, sarcocistosis), tierras en el caso de geohelmintiasis
(ascariasis, tricocefalosis, toxocariasis) y aguas en el caso de las enteroparasitosis
que se transmiten por contaminación fecal.
En nuestro país, la sospecha diagnóstica a nivel de atención
primaria es fundamental, dado que es el primer eslabón con el sistema
de salud. Se han implementado algunos laboratorios en el nivel primario,
donde se realiza el diagnóstico de algunos enteroparásitos
y se pueden derivar muestras a centros de referencia.
El objetivo de las técnicas diagnósticas es pesquisar e
identificar al parásito (en cualquiera de sus estados) lo que se
realiza con técnicas directas, o a través de técnicas
indirectas que evalúan la respuesta inmune del huésped .El
hallazgo de una forma parasitaria en cualquiera de sus estados es considerado
un diagnóstico patognomónico , en cambio la evidencia de
la respuesta inmune positiva hacia un agente parasitario sólo hace
posible un diagnóstico presuntivo.
Endoparasitos
Existe una variedad de técnicas que se utilizan según el
agente parasitario que se desea buscar, por lo que se deben conocer las
ventajas y desventajas de cada una para solicitarlas e interpretarlas
en forma adecuada.
Técnicas directas
Se basan en el diagnóstico morfológico de los distintos
estados de los parásitos. Tiene como objetivo pesquisar e identificar
distintas formas de protozoos (trofozoíitos , quistes, ooquistes)
y helmintos (proglótidas y huevos). Su sensibilidad depende de
las características de las técnicas, de la carga infectante,
de la biología de los parásitos, del transporte y preparación
de la muestra, de la implementación de equipos adecuados y de
la disponibilidad de tiempo y experiencia de los observadores.
Las técnicas de uso más habitual en Chile son los métodos
de Teleman.modificado y el de Burrows o PAF. este último tiene
la ventaja de permitir un apropiado diagnóstico de trofozoítos,
lo que tiene particular importancia en el estudio de la amebiasis intestinal.
Ambas son de gran utilidad para el clínico, pues pueden informar
la presencia de varios parásitos y comensales al mismo tiempo.
El reconocimiento de Cryttosporidium spp.como un imprtante agente etiológico
de diarrea, , principalmente en pacientes inmunocomprometidos, hizo
necesaria la incorporación de la técnica de Ziehl Neelsen
a la rutina en el laboratorio. Ella debe ser solicitada en forma explícita
por el clínico.
El estudio de enteroparásitos generalmente se realiza con muestras
de deposiciones, pero puede efectuarse en forma excepcional en el líquido
biliar, y aspirado duodenal. El examen parasitológico de deposiciones
puede ser seriado (3 a 6 muestras), o de sólo una muestra (examen
rápido y directo).Este último se utiliza para el diagnóstico
de urgencia, frente a cuadros diarreicos y disentéricos en niños
y adultos, especialmente en pacientes inmunocomprometidos.
La muestra se coloca en fijador PAF y se envía inmediatamente
al laboratorio, en donde se da prioridad a su análisis, por lo
que la respuesta puede ser entregada antes de una hora. Otro examen
de gran utilidad es el test de Graham, que se utiliza, especialmente
para la pesquisa de huevos de helmintos (Enterobius vermicularis) en
las márgenes de la zona perianal.
Técnicas indirectas
ELISA Amebiasis podría ser utilizada para el diagnóstico
de absceso hepático amebiano, pero hasta el momento no ha dado
buenos resultados en nuestro país, por la alta prevalencia de
la infectación que hace que existan muchas personas infectadas
asintomáticas con anticuerpos contra E histolytica.Si bien se
handescrito han descrito técnicas ELISA para pesquisa de antígeno
de Giardia lamblia en deposición, la presencia de poliparasitismo
hace que los métodos de Teleman y PAF sean de elección,
pues son de menor costo y mayor rendimiento.
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TABLA 1
TECNICA PARA DIAGNOSTICO DE ENTEROPARASITOS EN DEPOSICIONES
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Enfermedad
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Agente etiológico
|
Técnica
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Giardiasis
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Giardia lamblia
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PAF o Teleman
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Amebiasis
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Entamoeba histolytica
|
PAF o Teleman
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Cryptosporidiosis
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Crytosporidium spp.
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Ziehl Neelsen
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Isosporosis
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Isospora belli
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Flotación
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Distomatosis
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Distoma hepático
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Microsporidiosis
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Microsporidium spp.
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Microscopia electrónica
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* En el caso de Distomatosis se sugiere 10 muestras.
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Hemoparasitos e histoparasitos
Técnicas directas
Estos métodos se utilizan en la búsqueda de parásitos
circulantes en pacientes que están en fase aguda de la infección.
Son de utilidad en el diagnóstico de Tripanosomiasis americana
(Enfermedad de Chagas) malaria y filariasis.Se emplean las siguientes
técnicas:
- Examen de sangre al fresco. Una gota de sangre recién
extraída se observa entre lámina y laminilla, directamente
al microscopio.
- Frotis de sangre. Se extiende una gota de sangre recién
extraída, sobre un portaobjeto, se tiñe con May Grunwald
Giemsa o Wright.
- Gota gruesa. Se colocan tres gotas de sangre en un portaobjeto,
se mezcla con movimientos concéntricos con un alfiler o con
el extremo de un portaobjeto , se extrae la fibrina. se seca a temperatura
ambiente y luego se tiñe
- Microstrout o microhematócrito. Se toma una muestra
de sangre en tubo de microhematócrito y se centrifuga a 100
rpm por tres minutos. Se fractura el capilar en el límite de
la capa leucocitaria.Se deposita sobre un portaobjeto la capa de leucocitos
y plasma y se observa al microscopio.
- Xenodiagnóstico. Esta técnica sólo se
utiliza para enfermedad de Chagas.Se emplean ninfas de Triatoma spp.
libres de infección, las que se alimentan con sangre del paciente.Los
resultados se obtienen a los 30, 60 y 90 días.Esta técnica
sólo es utilizada en algunos centros de investigación
y puede ser reemplazada por PCR para T cruzi.
- PCR Trypanosoma cruzi. Se basa en la pesquisa de fracciones
del parásito a partir de secuencias conocidas de su ADN. la
técnica se basa en la ampliación de un segmento del
ADN del parásito, para luego caracterizarlo e identificarlo.
- El Pneumocystis carinii actualmente se diagnostica por el examen
de muestras de lavados broncoalveolar o expectoración, que
son teñidas con Giemsa o Gomori.Se están implementando
técnicas de apoyo diagnóstico complementarias (IFI,
y PCR).
- El diagnóstico de tricomoniasis urogenital habitualmente
se realiza por examen de una muestra de flujo vaginal, la que se observa
directamente al microscopio.Existen técnicas específicas
de cultivo e inmunodiagnóstico (imunofluorescencia) que se
emplean en investigación clínico-epidemiológica
.
- El diagnostico de triquinosis sólo excepcionalmente se realiza
mediante una biopsia muscular. Habitualmente se realiza mediante los
antecedentes clínicos epidemiológicos, los que pueden
ser apoyados por la presencia de eosinofilia en el hemograma y técnicas
serológicas (ELISA Trichinella spiralis), la que se ha hace
positiva en la fase de invasión.
- El diagnóstico directo de la presencia de la larva de Taenia
equinococcus se realiza por el estudio histológico de piezas
quirúrgicas, en el cual se identifica claramente la capa cuticular
(escleroproteica anucleada), patognomónica de esta parasitosis.
También se puede estudiar el contenido del quiste, siendo posible
encontrar la arenilla hidatírica , que está constituida
por diferentes formas del parásito, entre ellas protoescólices;
es patognomónico el hallazgo de "ganchitos" que son parte estructural
de este céstode. La biopsia incisionan está contra indicada
en pacientes en quienes se sospecha hidatidosis , por el riesgo de
romper el quiste y provocar un schockl anafiláctico o una siembra
de parásitos.
Técnicas indirectas
Las técnicas de inmunodiagnóstico son herramientas de
gran valor para evaluar la infección por ciertos agentes patógenos,
especialmente histoparásitos, pues no requieren de una interpretación
subjetiva, de detalles morfológicos o de la toma de muestra invasiva
para evidenciar el agente patógeno , como biopsias por ejemplo.
La detección de anticuerpos séricos (IgG e IgM) , se utiliza
para el diagnóstico de diversas histoparasitosis Se debe recordar
que algunas son enfermedades crónicas, en las cuales los parásitos
permanecen en los tejidos en estado latente, por lo que la IgG permanecerá
positiva por el resto de la vida, motivo por el cual es muy importante
considerar el título de IgG. La presencia de IgM, en cambio refleja
una etapa aguada y primoinfección de la parasitosis.Se está
estudiando la aplicación clínica de rutina de IgE e IgA
.
Para determinar la presencia de anticuerpos (IgG, IgM, IgA, IgE) se
pueden emplear una variedad de técnicas, entre ellas CIEF (contrainmuno-electroforesis),
ELISA(ensayo de inmunoanálisis) e IFI (inmunofluorescencia indirecta).
cada una de estas técnicas puede emplear distintos tipos de antígenos
del parásito: somáticos (crudos opurificados), ,etabólicos
(secretor - excretor), de superficie (parásito completo o secciones
de éste).Para el diagnóstico de patologías parasitarias
crónicas se sugiere el uso de dos técnicas complementarias.
En clínica es de mucha utilidad que el análisis de una
curva serológica, que se obtiene evaluando en dos momentos la
concentración de inmunoglobulinas para determinar la evolución
de la respuesta inmune. Es de especial importancia en infecciones cuando
se desea objetivar una fase aguda.. Por ejemplo se emplea para determinar
primoinfección en toxoplasmosis, enfermedad de chagas y toxocariasis.
Actualmente se dispone de ELISA Citicercosis (Cisticercus cellulosae)
ELISA Toxocara (Toxocara spp.).ELISA Fasciola )Fasciola hepatica),ELISA
Triquinosis (Trichinella spiralis) ELISA Hidatidosis (Taenia equinococcus).
Las intradermoreacciones, técnicas para medir inmunidad celular,
actualmente no se están utilizando de rutina.
Se han comenzado a implementar técnicas de biología molecular
para algunas parasitosis, entre ellas la PCR (reacción en cadena
polimerasa) dirigida a fracmentos del ADN del parásito.Se cuenta
en Chile con PCR T. cruzi dirigido a detectar ADN de kinetoplasto nuclear.
Este método sirve como indicador de la presencia de parásito
en la sangre y en tejidos. Se están haciendo esfuerzos por montar
PCR Amebiasis (Entamoeba histolytica), que sería de utilidad
en casos de invasión tisular(abscesos hepáticos) y en
pacientes que requieran inmunosupresión, pues aumentaría
la sensibilidad diagnóstica y permitiría realizar una
profilaxis secundaria y terapia oportunas.
Artropodos
Los principales artrópodos de interés médico se
muestran en la Tabla 2.
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TABLA 2.
ARTROPODOS DE INTERES MEDICO
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Clase
|
Orden
|
Ejemplos
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|
Insectos
|
Dípteros
|
Moscas
Mosquitos
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Blattaria
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Cucarachas
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Hemíptero
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Triatomídeos
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|
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Siponaptera
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Pulgas
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|
Anoplura
|
Piojos
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Arácnidos
|
Scorpionida
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Arañas
Escorpiones
|
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Acarina
|
Acaros
Garrapatas
|
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Crustáceos
|
Copepodo
|
Cyclops
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Técnicas directas
Tienen como objeto identificar el género y la especie y están
basadas en la observación con lupa o microscopio del artrópodo
en algunos de sus estados. Las muestras pueden ser trasladadas en seco
o en agua al laboratorio y pueden ser tomadas del huésped (ectoparásitos
permanentes) o del ambiente (ectoparásitos temporales).
Entre los artrópodos que más afectan al hombre se encuentran
los ácaros de la piel (Sarcoptes scabiei y Demodex folliculorum).
La técnica de toma de muestra, denominada Acaro test, es la ideal
para obtener el parásito. Otro artrópodo de alta prevalencia
es el arácnido Loxoceles laeta (Araña del rincón),
cuyo diagnóstico específico se realiza al examinar su
morfología y específicamente la distribución de
sus ojos (tres pares distribuidos en forma de triángulo).
El diagnóstico de miasis primarias y secundarias, específicas
o accidentales se realiza al visualizar el estado de la larva de estos
insectos, que desarrollan una metamorfosis incompleta, así como
su tamaño y morfología.
Manejo epidemiológico ante el diagnóstico de las parasitosis
El médico general debe recordar que algunas parasitosis son
de notificación obligatoria, para lo cual debe llenar el formulario
RCM 14 del Ministerio de Salud, en los casos de triquinosis, enfermedad
de chagas e hidatidosis . Para el caso de triquinosis, la notificación
debe realizarse en forma inmediata ante la sospecha clínica del
caso, con el objeto de decomisar la potencial fuente infectante.
Actualmente, con el aumento de viajes y migraciones, es de real importancia
la sospecha clínica de parasitosis no autóctona, para
lo cual es imprescindible que en la anamnesis de todo paciente se incluya
el análisis de viajes y traslados. Si se sospecha patología
noautóctona, debe explicitarse esta sospecha en la orden de examen,
para que el Laboratorio se realicen técnicas complementarias.
En este sentido cabe destacar el diagnóstico de malaria, que
debe plantearse frente a paciente con cuadro clínico compatible
(fiebre y anemia hemolítica) y con antecedentes epidemiológicos
de viajes a zonas de alta prevalencia, en cuyo caso los exámenes
directos ya mencionados deben realizarse a la brevedad.
Referencias escogidas
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Técnicas Mediterráneo, Santiago Chile 1991.
- García L., Bruclanes D. Diagnostic Medical Parasitology. Clínical
Microbiology, Clinical Laboratorioes UCLA Medical Center, Los Angeles.
Elsevier Science Publisher 1988.
- Gutiérrez Y. Diagnosis of Important Parasitic Diseases. Laboratory
Management:Payment for Hospital-Based Pathologist Services. Clinics
in Laboratory Medicine 1991; 11:1089.
- MISAL. Situación de Salud de Chile. División de Programas
de Salud. Ministerio de Salud de Chile. Departamento de Epidemiología.
1996.
- Murray P. and col. Manual of Clinical Microbiology. Sixth Edition.
1995. Murray PR, Beron EJ, Pfaller MA, Tenaver FC, Yanken RH, Editores
1995. American Society for Microbiology, Washington D.C.
- Pierce G. Health Issues of International Travelers. Infectous Disease
Clinics of North America 1992 Vol 6 número 2. Philadelphia. Saunders
Company Philadelphia.
- Tiersen D. and col. Clinical and Economic Practice of Quality, Control
Clinics in LaboratoryMedicine. December 1986. Saunders Company. Philadelphia.
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